您好!歡迎訪問徠卡顯微系統(tǒng)(上海)貿(mào)易有限公司網(wǎng)站!
全國(guó)服務(wù)咨詢熱線:

17806260618

當(dāng)前位置:首頁 > 技術(shù)文章 > 小腸類器官與胚胎發(fā)育的單細(xì)胞研究

小腸類器官與胚胎發(fā)育的單細(xì)胞研究

更新時(shí)間:2024-07-30      點(diǎn)擊次數(shù):207

引言

大型多細(xì)胞系統(tǒng)的實(shí)時(shí)成像是現(xiàn)代生物學(xué)研究中的一個(gè)重要挑戰(zhàn)。傳統(tǒng)顯微鏡技術(shù)在提供高分辨率三維圖像方面常有不足,尤其是對(duì)于需要最小光毒性的深層樣本。開發(fā)開放式多樣本雙視角光片顯微鏡在這一領(lǐng)域取得了顯著進(jìn)展。本文探討了這一創(chuàng)新顯微鏡系統(tǒng)的功能和應(yīng)用。





腸類器官




利用光片顯微鏡對(duì)模擬腸道上皮的復(fù)雜結(jié)構(gòu)——腸類器官進(jìn)行成像,追蹤細(xì)胞動(dòng)態(tài)和分化過程。顯微鏡詳細(xì)展示了數(shù)天內(nèi)的隱窩和絨毛形成,為細(xì)胞周期動(dòng)態(tài)和類器官內(nèi)不同細(xì)胞類型成熟提供了見解。


圖片
圖片

圖一:

a.表達(dá)hGem-mVenus和hCdt1-mCherry的腸類器官(左),染色顯示溶菌酶(Lys)和DLL1(中)。

b.表達(dá)hCdt1-mCherry的腸類器官的最大投影圖(MIP),疊加了反向追蹤細(xì)胞的軌跡,以時(shí)間進(jìn)行顏色編碼。虛線對(duì)應(yīng)于z投影。

c.對(duì)腸類器官的檢測(cè)1、檢測(cè)2及融合數(shù)據(jù)的z投影,疊加了反向追蹤細(xì)胞的軌跡,顯示時(shí)間進(jìn)程。

d.腸隱窩的放大圖,星號(hào)表示同時(shí)陽性表達(dá)hCdt1、Dll1和溶菌酶的細(xì)胞。

e.單個(gè)細(xì)胞的hCdt1、溶菌酶和Dll1強(qiáng)度隨時(shí)間的定量分析:陽性隱窩細(xì)胞(e);

f.陽性絨毛細(xì)胞(f)和陽性隱窩細(xì)胞(g)。

圖片

圖二:

e) 對(duì)在最后時(shí)間點(diǎn)位于隱窩中的三重陽性細(xì)胞(hCdt1、Dll1和溶菌酶)的hCdt1強(qiáng)度隨時(shí)間的量化。每種顏色代表一個(gè)單細(xì)胞(n = 4)。

f) 對(duì)在最后時(shí)間點(diǎn)位于絨毛中的hCdt1陽性細(xì)胞的hCdt1強(qiáng)度隨時(shí)間的量化。每種顏色代表一個(gè)單細(xì)胞(n = 7)。

g) 對(duì)在最后時(shí)間點(diǎn)位于隱窩中的hCdt1陽性細(xì)胞的hCdt1強(qiáng)度隨時(shí)間的量化。每種顏色代表一個(gè)單細(xì)胞(n = 9)。

文中對(duì)表達(dá)FUCCI2的腸類器官進(jìn)行了活體成像,并進(jìn)行了終點(diǎn)固定和免疫熒光評(píng)估其細(xì)胞類型組成。通過3D配準(zhǔn)將最后一個(gè)活體成像時(shí)間點(diǎn)與染色后的類器官疊加,使用Paneth細(xì)胞標(biāo)記溶菌酶(Lys)和分泌細(xì)胞標(biāo)記Dll1來檢測(cè)感興趣的細(xì)胞。三重陽性細(xì)胞(hCdt1+/Lys+/Dll1+)被反向追蹤以監(jiān)測(cè)Paneth細(xì)胞的成熟及其在G0/G1期的細(xì)胞周期停滯。成熟Paneth細(xì)胞的初始位置預(yù)測(cè)了類器官隱窩的最終位置。


接下來,比較了隱窩中的hCdt1+/Lys+/Dll1+ Paneth細(xì)胞與hCdt1+/Lys?/Dll?細(xì)胞(主要是腸干細(xì)胞)和類器官絨毛中的細(xì)胞(主要是腸細(xì)胞)。進(jìn)一步識(shí)別了那些在記錄開始前已經(jīng)終末分化的腸細(xì)胞和Paneth細(xì)胞。對(duì)于其他細(xì)胞,特別是在隱窩中的細(xì)胞,確定了它們出現(xiàn)的時(shí)間,從而能夠追蹤它們的完整成熟過程,固定時(shí)的平均細(xì)胞周期長(zhǎng)度為21.9小時(shí)。評(píng)估細(xì)胞類型特定的出現(xiàn)時(shí)間,得出結(jié)論,Paneth細(xì)胞比單陽性hCdt1細(xì)胞出現(xiàn)得更早,表明特定的細(xì)胞周期長(zhǎng)度和特定的分化順序。這種對(duì)細(xì)胞行為和成熟過程的洞見在沒有活體成像和免疫熒光結(jié)合整個(gè)類器官體積的情況下是無法實(shí)現(xiàn)的。






胚狀體




胚狀體是模擬早期胚胎發(fā)育的三維干細(xì)胞聚集體。光片顯微鏡捕捉到這些致密結(jié)構(gòu)的單細(xì)胞分辨率圖像,揭示了細(xì)胞運(yùn)動(dòng)和形態(tài)變化。追蹤胚狀體內(nèi)單個(gè)細(xì)胞的能力突顯了光片顯微鏡在研究動(dòng)態(tài)發(fā)育過程中的應(yīng)用潛力。


圖片
圖片

圖三:

h. 表達(dá)Lck-GFP的胚體在三個(gè)時(shí)間點(diǎn)(42小時(shí)Wnt前期,66小時(shí)Wnt中期和90小時(shí)Wnt后期)的z平面圖像。

i. 在h中部分突出顯示的胚體細(xì)胞,分別為種植后42小時(shí)、66小時(shí)和90小時(shí)。箭頭指示細(xì)胞的突起。

j. 使用Cellpose軟件對(duì)種植后42小時(shí)的Lck-GFP陽性細(xì)胞進(jìn)行的3D代表性分割。

k. 比較種植后42小時(shí)、66小時(shí)和90小時(shí)的細(xì)胞長(zhǎng)軸和短軸的比率,圖中顯示了中位數(shù)、第一和第三四分位數(shù)。

l. 胚體的最大投影圖(MIP),疊加了隨時(shí)間追蹤的細(xì)胞。

m. 細(xì)胞速度(μm/h)的小提琴圖,以觀察窗口分組,圖中顯示了中位數(shù)、第一和第三四分位數(shù)。

n. 在42小時(shí)、66小時(shí)和90小時(shí)種植后拍攝的胚體細(xì)胞軌跡,中心對(duì)齊到坐標(biāo)系原點(diǎn),并以顏色編碼表示時(shí)間進(jìn)程。

o. 在各個(gè)成像窗口中,Lck-GFP胚體細(xì)胞的軌跡長(zhǎng)度。細(xì)胞速度(μm/h)的分組小提琴圖,圖中顯示了中位數(shù)、第一和第三四分位數(shù)。

p. Lck-GFP嵌合胚體在各個(gè)成像窗口中,所有細(xì)胞的平均均方位移(m.s.d.)。比例尺:50 μm(a–d, h, j, l);20 μm(i)。

圖片

圖四:

h) 對(duì)懸浮狀態(tài)下成像的胚體在三個(gè)不同時(shí)間窗口中長(zhǎng)軸和短軸比率的比較。測(cè)量在每個(gè)成像窗口(42小時(shí)、66小時(shí)或90小時(shí))內(nèi)的3個(gè)胚體的3D體積上進(jìn)行,共33個(gè)時(shí)間點(diǎn)。分別對(duì)3753個(gè)數(shù)據(jù)點(diǎn)(42小時(shí))、3340個(gè)數(shù)據(jù)點(diǎn)(66小時(shí))和8861個(gè)數(shù)據(jù)點(diǎn)(90小時(shí))進(jìn)行了分析。圖中顯示了中位數(shù)、第一和第三四分位數(shù)。

i) 胚體發(fā)育過程中在三個(gè)不同時(shí)間窗口內(nèi)成像的細(xì)胞速度的小提琴圖,顯示了中位數(shù)(圖中數(shù)值)及第一和第三四分位數(shù)。每個(gè)觀察窗口中追蹤的數(shù)據(jù)點(diǎn)數(shù)量(來自3個(gè)單獨(dú)的胚體)如下:n = 622(42小時(shí)),n = 562(66小時(shí)),n = 539(90小時(shí))。胚體在懸浮狀態(tài)下成像。

與其他樣本不同,胚狀體是密集結(jié)構(gòu),因此難以單細(xì)胞分辨率成像。文中使用這個(gè)模型系統(tǒng)展示顯微鏡獲取單個(gè)細(xì)胞運(yùn)動(dòng)和形態(tài)特征的能力。標(biāo)準(zhǔn)胚狀體實(shí)驗(yàn)方案使用Wnt激活劑(Chiron99021)以提高中胚層形成效率。這可能會(huì)誘導(dǎo)類似上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化的行為并增加細(xì)胞遷移。為了分析胚狀體內(nèi)的細(xì)胞形態(tài),文中生成了嵌合體,其中一部分細(xì)胞(約10%)表達(dá)膜報(bào)告基因(Lck-GFP)。記錄胚狀體在Wnt脈沖前、中和后的動(dòng)態(tài)。此外,將胚狀體嵌入40%的Matrigel中,以防止樣本腔室中的機(jī)械旋轉(zhuǎn)。使用Cellpose對(duì)單個(gè)細(xì)胞進(jìn)行3D分割,從而計(jì)算長(zhǎng)軸/短軸比率,顯示細(xì)胞伸長(zhǎng)在Chir處理期間達(dá)到峰值。


后期階段,部分細(xì)胞顯示出較長(zhǎng)的細(xì)胞突起。這一觀察結(jié)果提出了細(xì)胞運(yùn)動(dòng)性在胚狀體發(fā)育過程中增加的假設(shè)。使用Fiji插件Mastodon,追蹤了Lck-GFP陽性細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)遷移的中位速度在胚狀體發(fā)育過程中增加。在Wnt脈沖期間,遷移速度的中位數(shù)增加了1.4倍。Wnt激活后成像的胚體展示了最長(zhǎng)的軌跡長(zhǎng)度。對(duì)3D均方位移的評(píng)估表明,從90小時(shí)開始追蹤的細(xì)胞速度增加,并且遷移行為發(fā)生了變化。這些發(fā)現(xiàn)共同表明,遷移增加,提示W(wǎng)nt激活增強(qiáng)了細(xì)胞運(yùn)動(dòng)性并可能在胚體中促進(jìn)了協(xié)調(diào)遷移。觀察到的細(xì)胞形態(tài)變化和運(yùn)動(dòng)性增加,部分表明了類似上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化的過程。這一趨勢(shì)在嵌入Matrigel中的胚體和懸浮狀態(tài)下的胚體之間保持一致。






開放式多樣本雙視角光片顯微鏡




設(shè)計(jì)和特點(diǎn)

開放式多樣本雙視角光片顯微鏡結(jié)合了雙重照明和雙重檢測(cè)鏡頭,以實(shí)現(xiàn)多角度的高分辨率成像。其主要特點(diǎn)包括:


雙重照明和檢測(cè)

系統(tǒng)采用兩個(gè)相對(duì)的照明鏡頭和兩個(gè)檢測(cè)鏡頭,從不同方向捕捉圖像。這種配置最小化了偽影,特別適用于厚大標(biāo)本的高質(zhì)量成像。

開放式設(shè)計(jì)

這種設(shè)計(jì)允許從頂部輕松訪問樣本,便于在成像過程中進(jìn)行樣本操作和添加試劑。

多孔安裝系統(tǒng)

可定制的多孔樣本支架使得多樣本的高通量成像成為可能,這對(duì)于需要并行處理和比較的實(shí)驗(yàn)至關(guān)重要。

圖片






相較傳統(tǒng)顯微鏡的優(yōu)勢(shì)




高通量和低光毒性

光片顯微鏡通過薄光片照明樣本,固有地減少了光毒性,這對(duì)于長(zhǎng)期的實(shí)時(shí)成像至關(guān)重要。雙視角設(shè)置在保持低光曝光的同時(shí)進(jìn)一步提升了圖像質(zhì)量。多孔系統(tǒng)允許同時(shí)成像多個(gè)樣本,與傳統(tǒng)顯微鏡方法相比顯著提高了通量。



詳細(xì)的單細(xì)胞分析

顯微鏡的高分辨率和雙視角功能使得在大而厚的樣本中進(jìn)行詳細(xì)的單細(xì)胞分析成為可能。這一特性對(duì)研究異質(zhì)生物過程尤其有價(jià)值,因?yàn)樾枰陂L(zhǎng)時(shí)間內(nèi)觀察細(xì)胞行為和相互作用。



靈活性和定制化

開放式設(shè)計(jì)和可定制的樣本支架提供了處理不同類型樣本和實(shí)驗(yàn)設(shè)置的靈活性。這種適應(yīng)性使顯微鏡適用于從類器官研究到發(fā)育生物學(xué)和癌癥研究的廣泛生物學(xué)研究。


開放式多樣本雙視角光片顯微鏡代表了實(shí)時(shí)成像技術(shù)的重大進(jìn)展。未來的增強(qiáng)可能包括整合自適應(yīng)光學(xué)以進(jìn)一步提升圖像質(zhì)量,以及結(jié)合激光消融或光遺傳刺激技術(shù)以在成像過程中操縱樣本。此外,該系統(tǒng)處理光學(xué)透明標(biāo)本的能力可能擴(kuò)展其在深層組織成像中的應(yīng)用。


開放式多樣本雙視角光片顯微鏡的開發(fā)和成功應(yīng)用標(biāo)志著生物成像領(lǐng)域的關(guān)鍵一步。通過在長(zhǎng)時(shí)間內(nèi)提供大型多細(xì)胞系統(tǒng)的高分辨率三維圖像,這一技術(shù)為理解細(xì)胞水平上的復(fù)雜生物過程開辟了新的途徑。



閱讀原文:

Moos, F., Suppinger, S., de Medeiros, G. et al. Open-top multisample dual-view light-sheet microscope for live imaging of large multicellular systems. Nat Methods 21, 798–803 (2024). 

參考文獻(xiàn):(上下滑動(dòng)查看更多)

1. Suppinger, S. et al. Multimodal characterization of murine gastruloid development. Cell Stem Cell 30, 867–884.e11 (2023). 

2. Beccari, L. et al. Multi-axial self-organization properties of mouse embryonic stem cells into gastruloids. Nature 562, 272–276 (2018). 

3. van den Brink, S. C. & van Oudenaarden, A. 3D gastruloids: a novel frontier in stem cell-based in vitro modeling of mammalian gastrulation. Trends Cell Biol. 31, 747–759 (2021). 

4. Pachitariu, M. & Stringer, C. Cellpose 2.0: how to train your own model. Nat. Methods 19, 1634–1641 (2022). 

5. Mastodon v.1.0.0-beta-26. GitHub 

6. Hashmi, A. et al. Cell-state transitions and collective cell movement generate an endoderm-like region in gastruloids. eLife 11, e59371 (2022). 

7. de Medeiros, G. et al. Multiscale light-sheet organoid imaging framework. Nat. Commun. 13, 4864 (2022). 

17. Serra, D. et al. Self-organization and symmetry breaking in intestinal organoid development. Nature 569, 66–72 (2019). 

8. Abe, T. et al. Visualization of cell cycle in mouse embryos with Fucci2 reporter directed by Rosa26 promoter. Development 140, 237–246 (2013). 


相關(guān)產(chǎn)品


圖片

Viventis LS2 Live 雙視野光片熒光顯微鏡
徠卡顯微系統(tǒng)(上海)貿(mào)易有限公司
地址:上海市長(zhǎng)寧區(qū)福泉北路518號(hào)2座5樓
郵箱:lmscn.customers@leica-microsystems.com
傳真:
關(guān)注我們
歡迎您關(guān)注我們的微信公眾號(hào)了解更多信息:
歡迎您關(guān)注我們的微信公眾號(hào)
了解更多信息